核酸濃度、純度的檢測(cè)-DNA的電泳檢測(cè)_第1頁(yè)
核酸濃度、純度的檢測(cè)-DNA的電泳檢測(cè)_第2頁(yè)
核酸濃度、純度的檢測(cè)-DNA的電泳檢測(cè)_第3頁(yè)
核酸濃度、純度的檢測(cè)-DNA的電泳檢測(cè)_第4頁(yè)
核酸濃度、純度的檢測(cè)-DNA的電泳檢測(cè)_第5頁(yè)
已閱讀5頁(yè),還剩22頁(yè)未讀 繼續(xù)免費(fèi)閱讀

下載本文檔

版權(quán)說(shuō)明:本文檔由用戶(hù)提供并上傳,收益歸屬內(nèi)容提供方,若內(nèi)容存在侵權(quán),請(qǐng)進(jìn)行舉報(bào)或認(rèn)領(lǐng)

文檔簡(jiǎn)介

1、核酸濃度、純度的檢測(cè)DNA的電泳檢測(cè)實(shí)驗(yàn)?zāi)?的原理:掌握紫外分光光度法檢測(cè)DNA濃度和純度的原理。掌握瓊脂糖凝膠電泳檢測(cè)DNA的原理技術(shù)技能掌握紫外分光光度法檢測(cè)DNA濃度和純度的步驟和計(jì)算方 法。掌握瓊脂糖凝膠電泳檢測(cè)DNA的操作1、DNA分子的瓊脂糖凝膠電泳檢測(cè)實(shí)驗(yàn)原理在中性或偏堿性pH值下帶負(fù)電荷的DNA向陽(yáng)極遷移。DNA電泳速率與電荷效應(yīng)無(wú)關(guān)(隨著堿基數(shù)的增加,DNA 分子量增加,電荷數(shù)也增加,這樣荷質(zhì)比基本維持一個(gè)常 數(shù))。瓊脂糖凝膠作為一種固體支持基質(zhì),主要利用DNA分子在 電場(chǎng)中的泳動(dòng)時(shí)的分子篩效應(yīng)來(lái)達(dá)到分離混合物的目的。在恒電場(chǎng)的一定電場(chǎng)強(qiáng)度下,DNA分子的遷移速率取決于 由D

2、NA分子的大小與構(gòu)型。DNA分子遷移速率與其相對(duì)分子量成反比。700bp900bp電泳方向相同分子量但不同構(gòu)型的DNA分子遷移速率不同。)質(zhì)粒DNA的分子構(gòu)型 (a)松弛線性的DNA(L (b)松弛開(kāi)環(huán)(OC) (c)超螺旋(cccDNA)三種構(gòu)型的質(zhì)粒的電泳模式圖譜影響電泳速率的因素DNA分子量的大小瓊脂糖凝膠的濃度DNA的分子構(gòu)象電壓電泳緩沖液的離子強(qiáng)度瓊脂糖凝膠濃度0.6%1%1.4%2%溴酚蘭的遷移率: 與之相當(dāng)?shù)腄NA大小1Kb0.6Kb0.2Kb0.15Kb瓊脂糖凝膠濃度1%1.4%二甲苯青遷移率:與 之相當(dāng)?shù)腄NA大小2Kb1.6Kb1、瓊脂糖2、TBE緩沖液: 臨用時(shí)用水稀至0

3、.5TBE( pH8.08.2)3、核酸電泳的指示劑溴酚蘭:在堿性液體中呈紫藍(lán)色二甲苯青:在堿性液體中呈藍(lán)色在電泳中,溴酚蘭和二甲苯青的遷移率與下列雙鏈線性DNA片段相當(dāng):試劑4、載樣緩沖液(Loading Buffer)注:指示劑一般與蔗糖、甘油或聚蔗糖400組成載樣緩沖液, 其作用是:增加樣品密度,使其比重增加,以確保DNA均勻沉入加樣孔內(nèi)在電泳中形成肉眼可見(jiàn)的指示帶,可預(yù)測(cè)核酸電泳的速度 和位置使樣品呈色,使加樣操作更方便5、熒光染料(GoldView,GV)GoldView (GV)是一種可代替溴化乙錠(EB)的新型核 酸染料,其靈敏度與EB相當(dāng),使用方法與之完全相同,在 100ml瓊

4、脂糖膠溶液中加入5l GoldView即可。在紫外透射光 下雙鏈DNA呈現(xiàn)綠色熒光,而單鏈DNA呈現(xiàn)紅色熒光。GoldView 不僅能染DNA,也可用于染RNA。PCR擴(kuò)增產(chǎn)物的檢測(cè)1.瓊脂糖凝膠的制備 根據(jù)樣品DNA片段大小確定瓊脂糖凝膠濃度; 膠板的制備:膠槽置于水平支持物上(兩側(cè)封口), 插上樣品梳子, 注意觀察梳子齒下緣應(yīng)與膠槽底面保 持1mm左右的間隙; 膠液的制備:稱(chēng)取0.2g瓊脂糖,置于100ml錐形瓶中,加入 20ml 0.5TBE稀釋緩沖液,用保鮮膜封口(避免水蒸氣 過(guò)度散失),然后在上面用槍頭扎個(gè)小孔(加熱過(guò)程中 可以放出少量水汽,以免瓶?jī)?nèi)壓力過(guò)大), 放入微波爐 里加熱至

5、瓊脂糖全部熔化(1-2min, 液體變透明),取出 搖勻(燙手?。?此為1%瓊脂糖凝膠液。待膠冷卻到60 度左右,加入DNA染料Goldview 2 ul,混勻; 倒膠:將膠液緩慢倒入膠板內(nèi),注意:倒膠時(shí)的溫度不 可太低,否則凝固不均勻;速度也不可太快,否則容易出現(xiàn) 氣泡。 待膠完全凝固后(10min),撥出梳子,注意不要損傷凝膠, 然后向槽內(nèi)加入0.5TBE稀釋緩沖液至液面恰好沒(méi)過(guò)凝 膠的上表面。2.加樣:將下列樣品在潔凈的保鮮膜或一次性手套表面混勻,用微量移液槍小心加入凝膠的樣品孔中。8l PCR產(chǎn)物 + 2l6載樣液8l 質(zhì)粒提取物 + 2l6載樣液8l pUC19 質(zhì)粒 + 2l6載樣

6、液(陽(yáng)性對(duì)照)5 lDL2000 Ladder Marker (DNA marker) 5 lEcoR T14Marker (陽(yáng)性對(duì)照)注:注意點(diǎn)樣品要放陰極端!每加完一個(gè)樣品要更換tip頭,以防止互相污染;注意上樣時(shí)要小心操作,避免損壞凝膠或?qū)悠凡鄣撞磕z刺穿。加樣順序電泳:加完樣后,合上電泳槽蓋,立即接通電源。控制電壓 最高不超過(guò)5V/cm(按兩極間距離計(jì)算出總電壓) 。當(dāng) 溴酚藍(lán)條帶移動(dòng)到距凝膠前沿約2cm時(shí),停止電泳。 (125V, 30min)觀察和拍照在透射儀的樣品臺(tái)上鋪一張保鮮膜(全班共用一張保 鮮膜),趕去氣泡,然后將膠槽內(nèi)的膠塊小心滑出至 樣品臺(tái)上面。在300nm波長(zhǎng)紫外透

7、射儀下觀察電泳膠板。DNA存 在處顯示出肉眼可辨的綠色條帶。紫光燈下觀察時(shí)應(yīng) 戴上防護(hù)眼鏡或有機(jī)玻璃面罩,以免損傷眼睛。 可拍 照記錄實(shí)驗(yàn)結(jié)果。本實(shí)驗(yàn)的預(yù)期結(jié)果PCR產(chǎn)物電泳照片圖1: DNA Marker DL2,0002、3: PCR擴(kuò)增產(chǎn)物(500bp片段)DL2000 DNA分子量標(biāo)準(zhǔn)bpDNA分子量標(biāo)準(zhǔn)500bpDL2000PCR產(chǎn)物質(zhì)粒在正常情況下以cccDNA構(gòu)型存在,在提取過(guò)程中由于機(jī) 械力、酸堿度、試劑等的原因,可能會(huì)使DNA鏈發(fā)生斷裂。所以, 多數(shù)質(zhì)粒粗提物中含有三種構(gòu)型的質(zhì)粒:共價(jià)閉合環(huán)狀 DNA(cccDNA);開(kāi)環(huán)DNA(ocDNA);線形DNA(lDNA)質(zhì)粒DNA

8、瓊脂糖凝膠電泳模式圖2、紫外分光光度法檢測(cè)核酸的濃度、純度基本原理DNA鏈上堿基的嘌呤環(huán)和嘧啶環(huán)結(jié)構(gòu)具有吸收紫 外光的性質(zhì),其最大吸收峰在260nm處。單鏈核酸(RNA)由于其堿基暴露,所以其吸光度較雙鏈高。濃度測(cè)定:在一定范圍內(nèi),DNA或RNA的光密度OD260與其含量成正比。 當(dāng)使用1cm比色杯,OD2601時(shí),dsDNA濃度約為50g /ml,RNA濃 度約為40g/ml;寡核苷酸濃度約為30g/ml。根據(jù)以下公式可 以計(jì)算DNA在溶液中的濃度:質(zhì)粒DNA濃度(g / l )=稀釋倍數(shù)OD26050/(1000 L)其中:L為比色杯的光程(杯的厚度);“50”為DNA在OD260=1時(shí)的

9、 濃度。質(zhì)粒DNA濃度(ng / l )=稀釋倍數(shù)OD26050注:OD260值應(yīng)在01之間,以在0.5左右為好。這樣讀數(shù)比較準(zhǔn)確。純度測(cè)定:當(dāng)DNA樣品中含有蛋白質(zhì)、酚或其他小分子污染物時(shí),會(huì) 影響DNA吸光度的準(zhǔn)確測(cè)定。一般情況下同時(shí)檢測(cè)同一樣品的OD260、 OD280(280nm是蛋白質(zhì)的吸收峰)和OD230(230nm是酚類(lèi)等雜質(zhì)的吸 收峰),計(jì)算其比值來(lái)衡量樣品的純度。經(jīng)驗(yàn)值:純DNA:OD260/OD2801.8(1.9,表明有RNA污染或DNA降解;1.6,表明有蛋白質(zhì)或酚污染) 純RNA: OD260/OD2802.0 (1.8 2.2)實(shí)驗(yàn)步驟取10 l自提的質(zhì)粒DNA溶液

10、用ddH2O稀釋10倍(終體積:100 l)。以蒸餾水作參比,對(duì)儀器進(jìn)行調(diào)零等調(diào)整后,測(cè)定質(zhì)粒樣 品的OD260和OD280。計(jì)算OD260/OD280之比,判斷其純度。計(jì)算質(zhì)粒樣品的濃度:DNA濃度(ng / ul )=稀釋倍數(shù)OD26050島津UVmini-1240紫外分光光度計(jì)的使用步驟1. 打開(kāi)電源,系統(tǒng)開(kāi)始自檢(6min)取3個(gè)比色皿,各加入100ulddH2O,并放入樣品室(最靠近 我們的比色皿(1號(hào))為對(duì)照)選擇“1. 光度模式”4. 設(shè)置波長(zhǎng)(260nm): go to WL調(diào)空白: 按“空白”鍵,調(diào)節(jié)不同比色皿透光值誤差自動(dòng)調(diào)零: Auto ZERO,空白樣品透光值歸零取出第

11、二、三號(hào)比色皿,倒掉ddH2O,加入100ul預(yù)先混好 的質(zhì)粒DNA樣品,關(guān)上蓋,按“Start”,開(kāi)始測(cè)量OD260, 記錄結(jié)果設(shè)置波長(zhǎng)(280nm): go to WL自動(dòng)調(diào)零: Auto ZERO,空白樣品透光值歸零按“Start”,開(kāi)始測(cè)量OD280,記錄結(jié)果。實(shí) 驗(yàn) 報(bào) 告 (一)1、記錄PCR擴(kuò)增產(chǎn)物和質(zhì)粒樣品的電泳圖譜,說(shuō)明帶型含義(對(duì)結(jié)果和出現(xiàn)的問(wèn)題進(jìn)行分析,如若未獲得單一的擴(kuò)增帶, 這是什么原因造成的?擴(kuò)增帶顏色深淺說(shuō)明什么等;將質(zhì)粒 樣品與標(biāo)準(zhǔn)的pUC19質(zhì)粒比較。)2、記錄質(zhì)粒DNA的OD260、OD280等原始數(shù)據(jù),計(jì)算比值和濃度, 并分析結(jié)果: OD260/OD280比值高或低各說(shuō)明什么?思考題恒定電場(chǎng)強(qiáng)度下,瓊脂糖凝膠電泳只適于分離多大的DNA片段?(20-50Kb)若有60kb100kb大小的系列DNA片段要進(jìn)行分離鑒定,問(wèn)

溫馨提示

  • 1. 本站所有資源如無(wú)特殊說(shuō)明,都需要本地電腦安裝OFFICE2007和PDF閱讀器。圖紙軟件為CAD,CAXA,PROE,UG,SolidWorks等.壓縮文件請(qǐng)下載最新的WinRAR軟件解壓。
  • 2. 本站的文檔不包含任何第三方提供的附件圖紙等,如果需要附件,請(qǐng)聯(lián)系上傳者。文件的所有權(quán)益歸上傳用戶(hù)所有。
  • 3. 本站RAR壓縮包中若帶圖紙,網(wǎng)頁(yè)內(nèi)容里面會(huì)有圖紙預(yù)覽,若沒(méi)有圖紙預(yù)覽就沒(méi)有圖紙。
  • 4. 未經(jīng)權(quán)益所有人同意不得將文件中的內(nèi)容挪作商業(yè)或盈利用途。
  • 5. 人人文庫(kù)網(wǎng)僅提供信息存儲(chǔ)空間,僅對(duì)用戶(hù)上傳內(nèi)容的表現(xiàn)方式做保護(hù)處理,對(duì)用戶(hù)上傳分享的文檔內(nèi)容本身不做任何修改或編輯,并不能對(duì)任何下載內(nèi)容負(fù)責(zé)。
  • 6. 下載文件中如有侵權(quán)或不適當(dāng)內(nèi)容,請(qǐng)與我們聯(lián)系,我們立即糾正。
  • 7. 本站不保證下載資源的準(zhǔn)確性、安全性和完整性, 同時(shí)也不承擔(dān)用戶(hù)因使用這些下載資源對(duì)自己和他人造成任何形式的傷害或損失。

最新文檔

評(píng)論

0/150

提交評(píng)論